2结果

　　2.1两组血糖及体质量的变化实验开始时,NC组和DM组仓鼠体质量分别为(123±6) g和(125±5) g,两组差异无统计学意义(P>0.05). 实验结束时,NC组体质量(133±10) g与实验开始时无显著变化(P>0.05),而DM组仓鼠体质量在实验第16 wk时降至(98±15) g,前后差异有统计学意义(P<0.01). 实验开始和结束时,DM组血糖水平均明显高于NC组(P<0.01);实验16 wk时胰岛素水平显著低于NC组(P<0.01，表1).表1正常对照组和糖尿病苍鼠组的体质量、胰岛素和血糖水平(略).

　　2.2正常对照组和糖尿病鼠视网膜在光镜下的形态特征和变化见图1~3.

　　2.3仓鼠血脂变化正常对照组TG，TC水平分别为(1.77±0.21)， (3.56±0.37) mmol/L; 糖尿病组TG为6.54±2.04,明显高于正常对照组(P<0.01); 而TC水平(5.21±2.07) mmol/L与正常对照组的差异无统计学意义(P>0.05).

　　2.4糖尿病组MMP2 mRNA的表达电泳鉴定RNA无明显降解. A260/280比值为1.8~2.0，实际浓度0.4~1.0 g/L，与正常对照组相比，糖尿病组苍鼠视网膜中MMP2 mRNA表达呈升高趋势(图4)，t值为23.12， 差异有统计学意义(表2).表2NC组和DM组苍鼠MMP2 mRNA表达水平(略)

　　3讨论

　　STZ是一种胰岛β细胞毒性物质，可选择性诱导β细胞调亡，使葡萄糖-胰岛素分泌耦联失调. 本文显示注射STZ成模后，多数病鼠血糖升高，胰岛素下降，观察期间出现多饮、多食、多尿及活动减弱等现象. 但也有部分病鼠血糖渐恢复正常. 此与四氧嘧啶糖尿病模型长期随访观察的结果相一致［1］. 因此，长期观察的实验中，应注意随访血糖. 本实验选用仓鼠作为实验动物,因为仓鼠在脂质代谢等方面与人类相似,且Simionescu等［2］给雄性Syrian仓鼠注射STZ成功诱发了糖尿病模型，本实验观察到,糖尿病仓鼠不仅表现为高血糖,还表现为高TG血症.

　　DR是糖尿病的严重并发症之一，表现为微循环结构及功能上的紊乱，最终新生血管的形成. 而在血管内皮细胞迁移和增殖过程中，内皮细胞周围的ECM必须有选择地降解，控制这一活动主要的就是MMPs家族. MMPs是一族参与ECM降解、其活性依赖金属离子Zn2+的复杂蛋白酶家系. 主要分为4大类：①胶原酶：包括MMP1和神经胶原MMP8，作用基质为纤维性胶原I，II和III；② 明胶酶：主要包括MMP2和MMP9，是血管内皮下基质IV型胶原降解的关键蛋白水解酶，对血管内皮细胞的游走起重要作用；⑧基质溶解素：MMP3和MMP7，作用底物广泛包括蛋白多糖、层粘蛋白、弹性蛋白、明胶和前胶原前肽；④膜型基质蛋白酶：MTMMP［3］. 它的主要功能是：降解细胞外基质膜有效成分、调节粘着、作用于细胞外组分其他蛋白成分而启动潜在的生物学功能、直接或间接参与胚胎发育、组织模型再塑及创伤修复等正常生理过程. 显然本实验结果可以证实MMP2参与了早期糖尿病模型视网膜结构的重塑，对新生血管的发生可能有重要作用. DR MMPs表达随病程进展升高，这可能是由于随着视网膜毛细血管基底膜的不断增厚，可致视网膜毛细血管大量狭窄甚至闭塞，导致视网膜缺血、缺氧，由于缺氧可促使血管内皮细胞在局部释放细胞因子(如TNFα，IL1)和血管活性物质(VEGF)诱导了MMPs的表达升高，使视网膜毛细血管基底膜的加速降解，允许内皮细胞发生迁移，随着增殖的内皮细胞接触新的ECM可能产生的MMPs的类型和或水平也就会不同了［4-5］.

　　目前国外的研究多集中于对DR晚期阶段(proliferative diabetic retinopathy,PDR)已形成的新生血管膜进行分析，而在此时细胞外基质的活动性生长和重塑早已启动. 这主要是因为新生血管的形成包括毛细血管内皮层下基底膜降解，内皮细胞迁移和增殖，新生血管形成和新的基底膜形成等一系列过程. 视网膜毛细血管内皮细胞的基底膜增厚及壁内周细胞的丧失是几乎所有的DR早期组织学改变的一个标志，基底膜的增厚能影响许多功能如血管通透性，细胞粘附、增殖分化及基因表达等，其成分的改变必然引起血管功能异常［8］. 在形成细胞外基质的两大部分（即基底膜和间质）中以IV型胶原为主要成分的基底膜构成一道阻滞屏障，IV型胶原酶（MMP2)可以作为血管内皮细胞的“开路先锋”降解基底膜. 体外实验研究也证实了IV型胶原酶参与微血管基底膜的降解代谢过程［6］. 因此Bishop［7］就指出如果我们能加深对IV型胶原即基底膜胶原的降解等血管形成的早期活动的理解将会更有可能给我们提示以找到新的治疗方法.

　　【参考文献】

　　［1］Kern TS, Engerman RL. Comparison of retinal lesions in alloxandiabetic rats and galactosefed rats［J］. Curr Eye Res，1994,13:863-867.

　　［2］Simionescu M, Popov D, Sima A, et al. Pathobiochemistry combined diabetes and atherosclerosis studied on novel animal: The hyperlipemichyperglycemia hamster［J］. Am J Pathol, 1996,148 :997-1014.

　　［3］郭立新，汪恕萍. 基质金属蛋白酶与糖尿病血管病变［J］. 国外医学内分泌分册，2000,20(3)：120-122.

　　［4］Sethi CS，Bailey TA，Luthert PJ，et al. Matrix metallopmteinase biology applied to vitreo retinal disorders［J］. Br J Ophthalmol, 2000, 6(84)：654-666.

　　［5］Salzmann J，Limb GA，Khaw PT，et al． Matrix metalloproteinases and their natural inhibitors in fibrovascular membranes of proliferative diabetic retinopathy［J］． Br J Ophthalmol, 2000,10 (84)：1091-1096.

　　［6］Lamoreaux WJ，Fitzgerald ME，Reiner A，et al. Vascular endothelial growth factor increase release of gelatinase A and decrease release of tissue inhibitor of metalloproteinases by  microvascular endothelial cells in vito［J］. Microvas Res，1998,55(1)：29-42.

　　［7］Bishop P. Matrix metalloproteinases and their natural inhibitors［J］. Br J Ophthalmol，2000,10(84)：1087-1093.

　　［8］Noda K，Ishida S，Inoue M，et al. Production and activation of matrix metalloproteinase2 in proliferative diabetic retinopathy［J］. Invest Ophthalmol Vis Sci, 2003,4(5)：2163-2170.

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