1  材料与方法

    1.1  材料  日本大耳白兔12只(锦州医学院实验动物中心提供)，小牛血清去蛋白注射液(锦州奥鸿药业有限责任公司生产)，爱维（即：医用透明质酸钠凝胶，山东博士伦福瑞达制药公司生产），BSS（平衡盐灌注液，日本参天制药株式会社生产），茜素红（天津市大茂化学试剂厂生产），锥蓝（天津市光复精细化工研究所生产）。白内障超声乳化系统（sovereign），接触型角膜内皮反射显微照相系统（EM-1020），光学显微镜(Olympus)。

    1.2  方法

    1.2.1  动物分组  将12只日本大耳白兔右眼设定为实验组，左眼为对照组。

    1.2.2  动物模型的制作  使用美国sovereign超声乳化系统，常规显微手术器械，灌注液为平衡盐溶液及含100 μg/ml DECB的平衡盐溶液；设置恒定参数：乳化功率40％，负压33.25 kPa，（1 mm Hg=0.133 kPa），瓶高170 mm，乳化时间100 s。手术前，所有日本大耳白兔均用复方托吡卡胺滴眼液散瞳，10％水合氯醛腹腔注射麻醉，用盐酸奥布卡因点双眼表面麻醉角膜。用兔头固定器固定好，生理盐水冲洗手术眼，于上方角巩膜缘做切口，穿刺入前房，注入黏弹剂；扩大切口至3 mm超声乳化头置于中央区乳化吸出晶体核及皮质；手术结束后1 min自角膜缘处吸出0.1 ml房水，随后实验组将含有100 μg/ml DECB液的平衡盐0.1 ml注入前房；对照组将0.1 ml平衡盐注入前房。术后妥布霉素地塞米松滴眼液点双眼，2 h 1次。

    1.2.3  术后观察和检测方法  术后观察和检测方法有：（1）角膜内皮定量检测：被测兔角膜点盐酸奥布卡因后，应用日本Topcon公司生产的EM-1020型接触型角膜内皮反射显微照相系统对角膜中央区0.25 mm×0.37 mm范围进行照相，行角膜内皮细胞形态学定量测定；然后进行计数分析，观察时间为术前和术后即刻、术后6 h、1天、2天、3天、7天。测量指标为平均细胞面积(average size)、细胞变异系数(coefficient of variability)、细胞密度（cell density）。（2）角膜内皮形态观察：术后即刻、术后24 h、术后3天，分别处死4只兔，锥蓝-茜素红联合染色后观察内皮形态改变。

    1.3  统计学方法  采用SPSS11.5统计软件分析，组间比较采用独立样本的t检验，组内比较采用单因素方差分析q检验。

    2  结果

    2.1  角膜内皮定量观察  术前、术后即刻、术后6 h、1天、2天、3天、7天进行角膜内皮细胞定量分析。实验组和对照组在各个时间点进行比较，使用SPSS 11.5统计软件分析细胞平均面积，组间比较采用独立样本的t检验，结果表明：术后6 h、1天、2天、3天同时间比较，差异有显著性（P<0.05）；实验组术后2天和对照组术后7天差异无统计学意义(P>0.05)。组内比较采用单因素方差分析q检验，实验组术后3天与术前差异无统计学意义（P>0.05），而对照组术后7天方能修复到和术前差异无统计学意义(P>0.05)。

    变异系数组间比较采用独立样本的t检验，结果表明：术后6 h、1天、2天、3天同时间比较差异有统计学意义（P<0.05）；实验组术后3天和对照组术后7天差异无统计学意义(P>0.05)。组内比较采用单因素方差分析q检验，实验组术后3天和术前差异无统计学意义（P>0.05），而对照组术前和术后各个时间点差异均有统计学意义（P<0.05）。

    细胞组间比较采用独立样本的t检验结果表明，术后6 h、1天、2天、3天同时间比较，差异有统计学意义（P<0.05）；实验组术后3天和对照组术后7天差异无统计学意义(P>0.05)。组内比较采用单因素方差分析q检验，实验组术后3天和术前差异无统计学意义（P>0.05），对照组术后7天和术前差异有统计学意义(P<0.05)。其比较结果。

    整个修复过程中实验组的内皮细胞面积小于对照组，变异系数小于对照组，内皮细胞密度大于对照组。显而易见，实验组的内皮细胞修复好于对照组，说明DECB可以促进内皮细胞的修复。

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