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高浓度葡萄糖对体外培养大鼠Müller细胞P2Y2受体的影响

http://www.cnophol.com 2009-8-26 10:40:28 中华眼科在线

  【摘要】  观察高浓度葡萄糖对体外培养的大鼠视网膜Müller细胞P2Y2受体表达的影响。方法:用改进的酶消化法纯化培养并用胶质原纤维酸性蛋白(GFAP)和谷氨酰胺合成酶(GS)鉴定大鼠Müller细胞。分别在对照组(5.5mmol/L)与高糖组(10,25,50mmol/L)中孵育24h和72h,通过免疫荧光及荧光强度半定量分析检测Müller细胞中P2Y2受体表达的变化。结果:纯化培养到第3~4代的Müller细胞,经鉴定纯度大于90%,表达GFAP和GS。在24h,10,25,50mmol/L组的荧光强度分别为31.05±7.06,59.17±11.42和84.11±12.72,与对照组(26.60±5.15)相比较均明显增高(P<0.01)。而在72h,仅25和50mmol/L组的荧光强度明显强于对照组(P<0.01)。结论:高浓度葡萄糖上调大鼠视网膜Müller细胞P2Y2受体的表达,提示这一受体可能参与糖尿病视网膜病变过程。

  【关键词】  2Y2受体 Müller细胞 高浓度葡萄糖

  0引言
   
  糖尿病视网膜病变是糖尿病最严重的并发症之一,是导致成年人盲的主要原因之一,其发病机制目前尚不十分清楚。研究发现在视网膜血管病变发生之前,已有视网膜神经变性,包括视网膜神经元及神经胶质细胞的变性及丢失[1]。Müller细胞是视网膜中一种重要的神经胶质细胞,其细胞体从内界膜一直贯穿至外界膜,广泛分布在神经元胞体和纤维之间,与神经元的关系极为密切,在视网膜的整个功能活动中起着重要作用,也易受病理因素的影响[2]。在糖尿病视网膜病变的发生发展过程中,Müller细胞也起到了重要的作用。
  
  P2Y2受体是嘌呤受体亚型P2Y受体的一种,属于G蛋白偶联受体,激活后的P2Y2受体可以活化如磷脂酶C、IP3、钙离子等活性物质。还能够活化多条信号通道,如PKC、磷酯酶A2、依赖钙离子的钾离子通道等。在培养的兔视网膜Müller细胞中存在P2Y2受体[3]。有研究表明,在某些细胞病理过程中可能有P2Y2受体表达的变化[4]。

  高血糖是导致糖尿病视网膜病变许多损害的主要原因之一,糖尿病危险因素及流行病学调查表明,血糖的高低与病变严重程度呈正相关[5]。高浓度的葡萄糖能够引起视网膜Müller细胞结构和功能上的很多变化[6,7]。但是否引起P2Y2受体表达的变化,尚未见报告。本实验的目的是检测不同浓度的葡萄糖条件下体外培养的视网膜Müller细胞中P2Y2受体的表达变化。

  1材料和方法

  1.1材料

  健康封闭群二级新生(生后5~7d)SD大鼠10只,由第四军医大学实验动物中心提供。DMEM(低糖)购自Hyclone公司;胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)购自Gibco公司;胶质原纤维酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein. GFAP)抗体购自北京博奥森公司;P2Y2受体抗体购自Sigma公司;谷氨酰胺合成酶(glutamine synthetase,GS)抗体购自abcam公司;FITC标记的山羊抗兔IgG购自北京中衫公司;其它化学试剂均为国产分析纯试剂。

  1.2方法

  1.2.1大鼠视网膜Müller细胞的原代培养与鉴定

  参照李树宁等[8]、Hicks等[9]制备视网膜Müller细胞的方法,简言之,眼球取出后,显微镜下无菌操作取出视网膜神经上皮层,Dhanks液冲洗,2.5g/L的胰蛋白酶2mL中37℃消化20min,加入含200mL/L FBS的DMEM,53μm孔径的尼龙筛网过滤,滤液离心(1000r/min)5min,接种于培养瓶中,于37℃,50mL/L CO2浓度孵箱中培养,每3天换液,待细胞融合,2.5g/L胰蛋白酶消化、洗涤,继续培养2~3遍。细胞形态基本一致后,按1∶2传代,传代后改用含100mL/L FBS的DMEM继续培养,传至3~4代后用于鉴定和实验。采用免疫荧光染色鉴定视网膜Müller细胞,一抗为兔抗大鼠GFAP抗体和兔抗大鼠谷氨酰胺合成酶(GS)抗体,工作浓度分别为1∶200和1∶5000。细胞纯度分析:计算单位视野内GFAP表达阳性的细胞占总细胞的比例。

  1.2.2 Müller细胞高糖模型的建立及试验分组

  在24孔培养板中预置盖玻片,将3~4代Müller细胞按照5×107/L的密度接种,待细胞生长接近融合时,改用不含FBS的低糖DMEM培养基(葡萄糖浓度为5.5mmol/L)培养24h,然后按照以下葡萄糖浓度分组:5.5,10,25,50mmol/L,每组设6个复孔,经过24,72h观察结果。

  1.2.3免疫荧光法检测Müller细胞P2Y2受体的表达 
  将制好的的细胞爬片取出,用PBS清洗,40g/L多聚甲醛固定30min,PBS清洗,1g/L TritonX100液体处理1h,PBS冲洗,40mL/L山羊血清封闭30min,加入兔抗大鼠P2Y2受体抗体,工作浓度为1∶200,空白对照组加PBS(0.01mmol/L, pH7.2),4℃保湿过夜,PBS洗涤,加入 FITC标记的山羊抗兔IgG抗体,工作浓度为1∶100,37℃保湿60min,PBS清洗,甘油封片,荧光显微镜观察并照相。

  1.2.4细胞免疫荧光强度判定

  免疫荧光图像分析:每组取3张爬片,每张爬片随机选取5个视野进行分析,在每个视野中选取10个细胞,应用图像分析软件ImagePro Plus 6.0测量每个细胞的荧光强度,取平均值作为该标本P2Y2受体的相对表达量。

  统计学处理:结果用均数±标准差表示,采用SPSS 11.0软件统计数据,每个时间点中组间差异判断采用单因素方差分析,两个时间点间总体差异采用随机区组设计资料的方差分析,α=0.01。

  2结果

  原代培养的细胞在接种后24h内贴壁逐渐铺展,形态以成纤维细胞样为主,胞体狭长,有较多突起,核呈圆形或卵圆形(图1A);少量呈上皮细胞样。原代细胞一般14~21d长满,经酶消化法纯化后,按1:2比例传代,传代后细胞周期缩短至10~14d,经过2次传代后细胞形态较一致,胞体较原代细胞大,折光性增强,细胞形态扁平不规则,胞质内原纤维较丰富,胞突的分支少而短,有清晰的圆形或卵圆形细胞核(图1B)。对3~4代细胞进行GFAP抗体及GS抗体染色,均显示绿色荧光,为阳性表达(图1C,1D)。纯化培养至第3代的Müller细胞,经鉴定其纯度为90%以上。不同葡萄糖浓度对Müller细胞P2Y2受体表达有明显的影响。在24h,随葡萄糖浓度增加,Müller细胞P2Y2受体的表达明显增强。阴性对照无荧光染色。测得的对照组,10,25,50mmol/L组的荧光强度,分别为26.60±5.15,31.05±7.06,59.17±11.42,84.11±12.72,各高糖组与对照组之间相比较,均有显著差异(P<0.01)(图2)。在72h,对照组,10,25,50mmol/L组的荧光强度分别为26.91±4.88,26.24±5.40,75.34±11.26,96.43±15.55,25mmol/L和50mmol/L组与对照组相比较,有显著统计学差异(P<0.01),但10mmol/L组与对照组比较没有显著性差异(P=0.574,图3)。两个时间点的数据间相比较总体上有显著性差异(F=92.439,P<0.01,图4)。

  3讨论

  在本实验中,我们成功分离、纯化培养了大鼠视网膜Müller细胞,并对体外培养的Müller细胞给予不同浓度葡萄糖的处理,观察了P2Y2受体表达的变化。

  P2Y2受体是嘌呤受体亚型P2Y受体的一种,首先是在小鼠NG10815神经母细胞瘤中被克隆出来[10],属于G蛋白偶联受体,其信号传导途径为Gq/11/PLC/Ca2+/PKC,Gi/o/AC/cAMP,其激动剂效价顺序为ATP=UTP>2MeSATP>ADP[11]。激活P2Y受体可以导致细胞内游离钙离子的增加和细胞外钙离子的内流,细胞内钙离子的增加活化BK通道,而BK通道的活化可能支持了钙离子的内流和对DNA合成的活化[12]。正常情况下,P2Y2受体的表达是偏低的,当受到病理因素的影响时,其表达和相应的功能是增强的,Turner等[4]证实当结扎大鼠一侧下颌下腺分泌导管后,结扎侧唾液腺细胞的P2Y2样受体活性和P2Y2受体mRNA水平相对于未结扎侧的是升高的。而Ballerini等[13]发现在缺乏葡萄糖和低氧环境中的星形胶质细胞P2Y2受体mRNA含量有明显的增加。Müller细胞也表达P2Y受体[12],但在糖尿病视网膜病变中P2Y2受体的表达情况还不清楚。

  体外25~30mmol/L葡萄糖浓度近似于糖尿病时体内的高糖状态,在本实验中,我们观察到了10mmol/L葡萄糖浓度条件下只在24h出现P2Y2受体表达的轻度增高,而72h后与对照组没有显著性差异,原因可能是本次试验的大鼠Müller细胞一直是用含100mL/L胎牛血清的低糖DMEM培养基(葡萄糖浓度与对照组相同)培养,撤除胎牛血清后,该细胞的营养来源主要是DMEM培养基中的葡萄糖和谷氨酰胺等,葡萄糖浓度的轻度增加改善了其营养状态,所以在早期有P2Y2受体的表达的轻度增加。而在25,50mmol/L葡萄糖浓度条件下均有P2Y2受体表达的明显增加,并随时间的延长表现为表达的增强,说明在模拟糖尿病状态的葡萄糖浓度条件下,会有P2Y2受体表达的变化。Müller细胞是一种重要的内环境调节细胞,糖尿病过程中体液里增高的葡萄糖浓度可能会增加其P2Y2受体的表达,而P2Y2受体表达的增加可能会引起其功能的上调,增加细胞内游离钙离子浓度,引发多种下游通路的活化,如GTP酶的激活[14]、MAPK的磷酸化和NFκB的易位[15,16]等,进而改变Müller细胞自身的多种功能,影响糖尿病视网膜病变的发展。

  本实验只是初步对P2Y2受体在不同的糖浓度条件下表达的免疫荧光半定量分析,而糖尿病视网膜病变中P2Y2受体变化所起到的作用还需要进一步研究。

  【参考文献】

  1 Fletcher EL, Phipps JA, WilkinsonBerka JL. Dysfunction of retinal neurons and glial during diabetes. Clin Exp Optom 2005;88(3):129131

  2 Mizutani M, Gerhardinger C, Lorenzi M. Müller cell changes in human diabetic retinopathy. Diabetes 1998;47(3):445449

  3 Liu Y, Wakakura M. P1/P2purinergic receptors on cultured rabbit retinal Müller cells. Jpn J Ophthalmol 1998;42(1);3340

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  6冷瀛,王越晖,马佳,等.高糖对视网膜Müller细胞bFGF表达及钠离子通道的影响.中国实验诊断学 2006;10:521524

  7曾凯宏,许红霞,糜漫天,等.牛磺酸对高糖刺激大鼠视网膜Müller细胞GLAST和GS表达的影响.国际眼科杂志 2008;8(1):4144

  8李树宁,王竫华,白海青,等.改进的酶消化法培养新生大鼠Müller细胞.眼科研究 2005;4(23):155157

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  10 Lustig KD, Shiau AK, Brake AJ, et al. Expression cloning of an ATP receptor from mouse neuroblastoma cells. Proc Natl Acad Sci USA 1993;90(11):51135117

  11梅林,方伟岗.P2Y受体研究进展.生理科学进展 2005;36(2):155158

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  13 Ballerini P, Di Iorio P, Caciagli F, et al. P2Y2 receptor upregulation induced by guanosine or UTP in rat brain cultured astrocytes. Int J
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(来源:互联网)(责编:xhhdm)

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