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Thapsigargin对人晶状体上皮细胞系SRA01/04增殖抑制的作用机制

http://www.cnophol.com 2009-9-10 10:07:30 中华眼科在线

    2.3   细胞超微结构的改变

    TG处理组中细胞的胞浆发生浓缩,胞核内染色质浓集、贴边聚集在核膜周围、染色质形成新月体样变化和凋形成亡小体等典型的细胞凋亡改变的特征(图3)。

    2.4   细胞原位凋亡标记

    原位末端标记的SRA01/04细胞中,细胞核内存在棕黄色/棕褐色的颗粒状沉淀,形状不一,有的核全染,有的染成新月状,有的呈点状。在正常对照组,TUNEL阳性颗粒非常少见,而随着TG浓度的增加,TUNEL阳性细胞所占百比例随着增加,呈浓度依赖性(图4)。

    2.5   Capase3活性亚单位的阳性表达

    美国cell signaling公司最新生产的兔抗人cleaved Caspase3抗体能特异性检测Caspase3的17/19 ku活性亚单位,而对完整的Caspase3及其它Caspases的活性片段无免疫反应。细胞核(Hoechst 33342,蓝色荧光)体积变小或者形成凋亡小体等具有凋亡特征的细胞的胞浆内出现点状或者弥漫性cleaved Caspase3免疫反应阳性荧光(FITC,绿色荧光),而细胞核形态完全正常者则表现为cleaved Caspase3免疫反应阴性(图5)。

    该结果证实了Caspase3只在细胞凋亡时被激活理论,同时也说明TG可能通过Caspase家族诱导人SRA01/04细胞凋亡,区别于少数非Caspase家族凋亡途径。

    另一方面流式细胞仪检测cleaved Caspase3细胞阳性表达率的结果显示:随着TG浓度的增加,cleaved Caspase3细胞阳性表达率明显增加,且呈剂量依赖性,当TG为10 μmol/L,几乎为100%(图6)。统计分析采用ANOVA,F=127.779,P﹤0.001。除0.1 μmol/L及0.5 μmol/L组无显著性差异(P=0.140),其余各组间比较均有显著性差异(P﹤0.01)。

    3   讨   论

    3.1   TG诱导人晶状体上皮细胞系SRA01/04凋亡

    TG抑制SRA01/04细胞的增殖,MTT法检测IC50大约为0.8 μmol/L。流式细胞仪检测结果显示处理组在细胞周期的G1峰前出现亚G1峰,且该峰在细胞周期中所占的百分比随着TG浓度的增加而增加;透射电镜进一步地证实了细胞的超微结构发生了改变:细胞膜皱缩;染色体浓缩、边集,凋亡小体形成,这些结果均表明TG诱导了SRA01/04细胞凋亡。TUNEL法检测细胞凋亡比例也随着TG浓度的增加而增加,呈浓度依赖性。因此,TG是通过诱导细胞凋亡而抑制SRA01/04细胞增殖的。

    3.2   TG剂量依赖性激活Caspase3

    哺乳动物细胞的程序性死亡是在一定条件下诱导的通过一系列信号级联转导的有秩序的死亡过程。除少数细胞经非Caspase依赖途径凋亡,大多数细胞是经Caspase依赖途径凋亡。Caspase级联系统在凋亡诱导过程中扮演了极其重要的角色,而在Caspase级联信号传导过程中,Caspase3(又称CPP32, TAMA, apopain)目前被普遍认为是Caspase家族中效应Caspase蛋白,是细胞凋亡蛋白酶级联反应的必经之路和关键的调节点[7]。在原核细胞中,凋亡效应蛋白编码基因包括CSP-1和CSP-2,果蝇属则包括DRICE,DCP-1,DECAY,DATDREAM,它们和哺乳动物的Caspase3的基因编码存在极其相似的同源保守序列。

    Caspase3在正常情况下以无活性的酶原形式(分子量31594 u)存在于细胞质内,当细胞凋亡时被激活,形成大(17 ku)小(12 ku)两个活性片段从而发挥生物学功能[7]。共聚焦显微镜和流式细胞仪的结果与目前认为的凋亡与Caspase3之间的相关性是一致的[8,9]。这些结果更进一步地说明TG诱导SRA01/04细胞凋亡,另一方面也说明了细胞是经Caspases途径凋亡。

    目前普遍接受的观点认为,凋亡具有三种途径:细胞膜死亡受体途径、线粒体途径、内质网应激途径,其中内质网应激途径受到越来越多的关注。而20世纪90年代初,Thastrup和Sabala就分别提出,TG是一种内质网/肌浆网上Ca2+-ATPase的抑制剂,从而对胞内Ca2+信号进行调节[10,11]。所以我们推测Caspase3的激活可能是由于TG抑制SRA01/04细胞内质网Ca2+-ATPase,破坏内质网内Ca2+动态平衡,造成内质网应激,激活上游的Caspases,如Caspase12等。Caspase3的激活导致细胞呈现典型细胞凋亡形态学改变。可以想象,如果在白内障术采用TG处理的人工晶体可能对超声乳化联合人工晶体植入术后晶状体上皮细胞的增殖起到抑制作用,TG有可能成为防治后发性白内障的临床应用的药物。

    无论在生理状态、白内障试验模型以及白内障患者,中央与周边区域的晶状体上皮细胞生长特性都存在差异,因此相应的增殖能力不同[12]。在高糖环境下LEC增殖能力不同程度的受到影响,可能与糖性白内障的发生有一定的关系[13]。然而有关晶体上皮细胞的一系列研究都最终指向了如何抑制其增殖活性这一方向。本研究发现, TG明显抑制晶状体上皮细胞系SRA01/04细胞的增殖,且其抑制增殖机制有可能是激活Caspase3,通过Caspase家族级联系统诱导体外培养的人晶状体上皮细胞系SRA01/04细胞凋亡而产生的。本研究结果为进一步应用TG进行后发性白内障药物防治的动物实验研究提供依据。

    【参考文献】

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    AUFFARTH G U, RABSILBER T M, REULAND A J. New method for the prevention of posterior capsule opacification [J]. Ophthalmologe, 2005, 102(6): 579-586.

    OHATA H, TANAKA K, AIZAWA H, et al. Lysophosphatidic acid sensitises Ca2+ influx through mechanosensitive ion channels in cultured lens epithelial cells [J]. Cell Signal, 1997,9: 609-616.

    WILLIAMS M R, et al. Calcium mobilisation modulates growth of lens cells [J]. Cell Calcium, 1996,19(8):83-89.

    KARLSSON J O, ANDERSSON M, KLING-PETERSEN A, et al. Proteolysis in human lens epithelium determined by a cell-permeable substrate [J]. Invest Ophthalmol Vis Sci, 1999, 40(9): 261-264.

    GUPTA S, KNOWLTON A A. HSP 60, Bax, Apoptosis and the Heart [J]. J. Cell Mol Med, 2005, 9(3): 51-58.

    YANG L Q, FANG D C, WANG R Q. Effect of NF-κB, survvin, Bcl-2 and Caspase3 on apoptosis of gastric cancer cells induced by tumor necrosis factor related apoptosis inducing ligand [J]. World J Gasreonenterol, 2004, 10(1): 22-25.

    张振雨,叶伟,黄东生,等. 兔软骨终板细胞凋亡与Caspase-3和Fas表达的实验研究 [J]. 中国临床解剖学杂志, 2006,24(5):553-556.

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    SABALA P, CZATNY M, WORONCZAK J P, WORNCZAK J P. Thapsigargin: potent inhibitor of Ca2+ transport ATP-ases of endoplasmic and sarcoplasmic reticulum [J]. Acta Biochim Pol, 1993, 40(3): 309-19.

    马 璇,吴明星,张艳丽. 不同区域晶状体上皮细胞基因表达差异分析 [J]. 中山大学学报:医学科学版, 2006, 27(5):553-561.

    李 霞,刘奕志,吴明星. 高糖对人晶状体上皮细胞缝隙连接细胞间通讯的影响 [J]. 中山大学学报:医学科学版, 2005, 26(3):257-259.

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(来源:互联网)(责编:xhhdm)

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