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骨桥蛋白与VEGF在增生性玻璃体视网膜病变前房液中的表达

http://www.cnophol.com 2009-6-26 10:58:29 中华眼科在线

    【摘要】  目的:骨桥蛋白(osteopontin,OPN)和血管内皮生长因子(VEGF)与增生性疾病关系密切,我们实验的目的是分析增生性玻璃体视网膜病变(proliferative vitreous retinopathy,PVR)前房液中OPN与VEGF的水平,探讨OPN,VEGF与PVR之间的相关性。方法:取200706/200807总共17例PVR病例的前房液样本(A组),20例年龄相关性白内障病例前房液样本(B组),采用酶联免疫吸附试验(ELISA)同时定量测定前房液OPN及VEGF浓度。结果:前房液中:A组OPN浓度377.0±56.6ng/mL, VEGF浓度521.1±92.4ng/mL;B组OPN浓度286.5±49.3ng/mL, VEGF浓度249.0±83.3ng/mL。A组较B组OPN表达升高(P<0.05),VEGF表达增高(P<0.05)。结论:PVR时前房液中OPN与VEGF水平增高,说明OPN与VEGF在PVR的发生、发展中可能起到促增生的作用。

    【关键词】  骨桥蛋白 VEGF 增生性玻璃体视网膜病变 前房液

  0引言

  增生性玻璃体视网膜病变(proliferative vitreous retinopathy,PVR)是一种玻璃体视网膜增生性疾病,由于致病因素的影响,导致视网膜色素上皮、神经胶质细胞等游走、附着、增生,可形成细胞性膜,进而造成牵拉性视网膜脱离。许多研究已经发现增生相关蛋白OPN存在于各种人类体液,包括血液、尿液及乳液等,而VEGF的研究则更为广泛、细化。然而有关PVR前房液中OPN和VEGF的联合测定却未见明确报道。本实验采用ELISA定量测定OPN和VEGF方法,通过对PVR前房液中OPN与VEGF含量的测定,分析PVR患者与正常人前房液中含量的差异,初步了解OPN和VEGF之间的联系,以及两者与PVR发生、发展之间的关系。

  1材料和方法

  1.1材料

  江苏省人民医院眼科200706/200807共收集17例(男8例,女9例)PVR患者前房液,平均年龄49.1岁(A组);前房液对照组选取年龄相关性白内障眼的前房液20例(男10例,女10例),平均年龄56.2岁(B组)。A组与B组间无年龄、性别统计差异。诊断标准参照PVR国际分类法(1983年),直接、间接眼底镜检查。A组均无眼部手术史,行现代闭合式玻璃体切割联合晶状体摘除手术。排除眼外伤、糖尿病、以及高血压、眼底静脉栓塞等引起的牵引性视网膜脱离等病例。所有的患者都知情同意,所有的研究都符合赫尔辛基宣言。开睑后,以0.5g/L碘伏稀释液消毒结膜囊,无菌生理盐水反复冲洗,无菌纱布吸尽结膜囊中残液,以1mL注射器自2∶00位角膜缘进入前房抽取约0.05mL前房液。人OPN试剂盒(Human Osteopontin Immunoassay,Catalog Number DOST00)购自美国R&D公司。采用美国∑550型酶标仪。超纯水、10*pcr buffer、镁离子(25mmol/L)、sybr(50x)(美国invitrogen公司),Taq酶(5U/μL)(产品编号11304029,美国invitrogen公司),dNTPs(25mmol/L)(产品编号BF6901B,TaKaRa 公司),引物(上海英骏公司),采用BIOrad公司的IQ5荧光定量仪器测定。

  1.2方法

  前房液OPN与VEGF浓度测定:从冰箱中取出标本,置于室温下10min待测。根据ELISA试剂盒的说明,将标准品用稀释液定比稀释,充分混匀。将酶标板各孔依次编号,每孔加RD16100μL,并加入50μL标准液或样品,混匀封口。室温下孵化2h,弃液,冲洗液清洗4次。每孔加入200μL OPN Conjugate,封口室温下孵化2h。弃液,冲洗液清洗4次。避光情况下每孔加入200μL底物显色溶液,混匀,孵化30min。再每孔加50μL反应终止液,混匀。酶标仪550nm处读数,30min内测定各孔吸光度值(A值)。VEGF测定方法类似。根据定比稀释标准品的A值绘制标准曲线,以样品的A值和标准曲线算出样品中OPN与VEGF的含量。

  统计学分析:实验数据均以均数±标准差(  ±s)表示,使用SPSS 11.5 for Windows软件包进行两样本均数的t检验,P<0.05表示具有显著性差异。

  2结果

  前房液中:PVR组(A组)OPN浓度377.0±56.6ng/mL, VEGF浓度521.1±92.4ng/mL;正常组(B组)OPN浓度286.5±49.3ng/mL, VEGF浓度249.0±83.3ng/mL。A组较B组OPN表达升高(P<0.05),VEGF表达增高(P<0.05)。

  3讨论

  增生相关蛋白OPN是一种带负电的分泌性磷酸化糖蛋白,可由多种组织细胞合成与分泌,相对分子质量约44kDa,约含300个氨基酸残基。其在许多系统疾病中被发现参与多种组织细胞对损伤的修复过程,有促细胞移动[1]、黏附和增生分化等功能。PVR作为一种眼部增生性疾病,其病理机制在于视网膜色素细胞(RPE)的迁徙和增生分化,视网膜胶质细胞等协同参与。眼部存在血视网膜屏障,有效地阻断了来自脉管系统对眼内环境的影响。由于存在房水循环的前后部交通和物质交换,并且在一些眼前部疾病前房液中OPN升高[2]推测有旁分泌的存在,前房液中OPN的测定能一定程度上反应PVR时眼内细胞分泌的OPN水平而能分析出OPN与PVR发生之间的联系。本实验测得PVR病例前房液中OPN浓度为377.0±56.6ng/mL,较正常组286.5±49.3ng/mL明显升高,说明了OPN浓度升高与PVR的形成极可能具有非常密切的关系。OPN主要与整合素受体或CD44受体相结合发挥生理作用[3],由整合素介导的RPE细胞与细胞外基质蛋白以及RPE细胞之间的黏附则涉及PVR形成[4]。与OPN含有相同序列结构(RGD序列,ArgGlyAsp)的人工合成或生物提取的可溶性小分子多肽能够竞争性抑制黏附,进而阻止细胞的增生、迁移、分化[5,6],在体内实验中也能抑制RPE细胞介导的细胞增殖所引起的牵拉性视网膜脱离[2]。这些与本实验中PVR时前房液的OPN浓度升高进而可能促进增生的结论相吻合。VEGF及其受体在正常的角膜各层均有表达,包括上皮层、基质层、内皮层,但其表达量很低,而在眼部一些疾病中则高表达[7],能促使内皮细胞的增生、迁移,蛋白水解和病理性血管生成[8,9]。PVR时细胞迁移、增生,前房液中的VEGF含量可能由于旁分泌和房水循环而较正常显著增高,显示VEGF对PVR的形成有一定的促进作用。而国内外在眼部的研究也证实了PVR患者玻璃体液中VEGF增高[10],并认为VEGF可以促进增生膜形成[11]。在其他系统疾病中VEGF能诱导OPN导致上皮细胞迁移[12],并且VEGF与OPN可能呈协同作用,使血管生成促进肿瘤生长和转移,OPN上调VEGF效应,协同刺激内皮细胞迁移和管腔形成。在本实验中前房液的OPN与VEGF含量都显著增高佐证了两者在眼部协同促进PVR形成的关系。为PVR的预防、诊断和治疗提供了新的思维和方法。
   
  总之,明确了OPN与VEGF在PVR前房液中高表达,为继续研究OPN,VEGF与PVR的关系提供了基础。但是PVR的形成是极其复杂的过程,涉及多种细胞因子,如PDGF[13],TGFb2[14]等,并且可能存在多条生物活性通路激活。细胞的迁徙和增生分化是目前普遍公认的PVR发生机制,但其具体增生机制仍是困扰人们的一个难题,需要进一步的研究来明确。

【参考文献】

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  2云波,刘玉福,施玉英.精氨酸甘氨酸天门冬氨酸肽及其在眼科的应用.国外医学眼科学分册1999;23(4):199203

  3 Casals G, Ordi J, Creus M, et al. Osteopontin and alphavbeta3 integrin expression in the endometrium of infertile and fertile women. Reprod
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  5 Avery RL, Glaser BM. Inhibition of retinal pigment epithelial cell attachment by a synthetic peptide derived from the cellbinding domain of fibronectin. Arch Ophthalmol1986;104(8):12201222

  6 Yang CH, Huang TF, Liu KR, et al. Inhibition of retinal pigment epithelial cellinduced tractional retinal detachment by disintegrins, a group of ArgGlyAspcontaining peptides from viper venom. Invest Ophthalmol Vis Sci1996;37(5):843854

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  11 Chen YS, Hackett SF, Schoenfeld CL, et al. Localisation of vascular endothelial growth factor and its receptors to cells of vascular and avascular epiretinal membranes. Br J Ophthalmol1997;81(10):919926

  12 Shijubo N, Uede T, Kon S, et al. Vascular endothelial growth factor and osteopontin in tumor biology. Crit Rev Oncog2000;11(2):135146

  13 Dieudonn SC, La Heij EC, Diederen RM, et al. Balance of vascular endothelial growth factor and pigment epithelial growth factor prior to development of proliferative vitreoretinopathy. Ophthalmic Res2007;39(3): 148154

  14 Kita T, Hata Y, Kano K, et al. Transforming growth factorbeta2 and connective tissue growth factor in proliferative vitreoretinal diseases: possible involvement of hyalocytes and therapeutic potential of Rho kinase inhibitor. Diabetes2007;56(1):231238

(来源:互联网)(责编:zhanghui)

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