PFCL引起角膜和视网膜发生病理性改变的确切原因尚不清楚，可能是因为以下几点。

　　4.1   机械重力作用［27］  由于其大于水的比重可对视网膜产生顶压，影响了视网膜及脉络膜的血供进而产生进一步病理改变。当注射到视网膜面以后，液体的重力使本身就已缺血的视网膜进一步受到压迫，同时也影响脉络膜血循环。动物实验显示，视网膜结构改变主要是在与液体接触的下方视网膜。

　　4.2   自由基的毒性作用  由于全氟化碳液体制作工艺的原因，存在着少量的杂质，而未被充分氟化，此类未充分氟化物中的氟化合物、双键化合物极不稳定，分离后形成了各类自由基，进而对眼内组织产生了潜在的损害。因为其具有很强组织毒性作用。最近研究表明，改变PFCLs制备方法可提高PFCLs纯度，如临床常用的PFCLs制备通常采用了取代反应：用氟原子取代氢原子，反应中产生的热能，可使得不稳定的杂质化合物成分产生。

　　4.3   分子结构本身的作用  全氟菲不含氧及氢原子，能在眼内保存较长时间（＞2周）而不引起眼内结构的损害。而全氟三丁烷则由于含有氢原子而在眼内引起继发改变的时间最短。

　　4.4   Müller细胞对钾离子的虹吸作用障碍假说［27］  由于视网膜与玻璃体之间正常的离子交换机制遭到破坏，造成视网膜内外的离子浓度失衡而导致视网膜损害。正常时Müller细胞通过虹吸作用将多余的钾离子排入玻璃体腔内，从而缓冲视网膜细胞外的钾离子浓度。当全氟化碳液体作为玻璃体腔填充物与视网膜的内界膜直接接触时，影响了Müller细胞对钾离子的虹吸作用，造成大量钾离子存积在视网膜（尤其是外层视网膜）的细胞外间质中，可以引起神经元变性和细胞死亡。

　　5  全氟化碳液体的注入与取出

　　5.1  注入  （1）首先行完全的玻璃体切割手术，松解机化灶，使网膜恢复活动性。（2）将细针头置于后极部乳头前，形成一个液球，然后在液球内缓缓注入，使网膜从后极向周边部逐渐复位，网膜下液可从裂孔排出。（3）由于PFCLs具有表面张力，一般不会在小裂孔处进入网膜下。

　　5.2  取出  由于全氟化碳液体长期存留在眼内会对组织产生一定毒性作用，手术结束后须及时取出全氟化碳液体，可采用气体―液体交换或液体―硅油交换，利用其比重大、黏度低的特性用笛针吸除，但往往不能完全取净，由于屈光间质观察不清或全氟化碳液体本身界面的原因，会在术后残留少量液体于网膜表面，并随之形成小液滴最终挥发排出。

　　6  展望

　　全氟化碳液体给复杂性视网膜脱离的治疗带来了希望，已经越来越广泛地应用在眼科玻璃体视网膜手术中，为广大眼科医师提供了一种有效的液体操作工具。但由于其潜在的眼内毒性，目前只能作为暂时的玻璃体填充物，术后须立即取出。为此国外已有不少学者开始研制可以在眼内长期存留的PFCLs［28］，其研究方向是在碳化合物中加入氟碳链，使之纯度及生物耐受性提高，虽然目前仍停留在实验室观察阶段，但其发展前景值得我们努力和进一步关注。

　　【参考文献】

　　1  Frey R, Beisbarth H, Stosseck K,et al.Fifth international symposium on perfluorochemical blood substitutes.Mainz: Verlag,1981,321.

　　2  Chang S. Low viscosity liquid fluorochemicals in vitrous surgery. Am J Ophthalmol,1987,103:38-42.

　　3  Miyamoto K, Refojo MF, Tolentino FI, et al. Perfluoroether liquid as a long-term vitreous substitute. An experimental study. Retina,1984,4:264-268.

　　4  Chang S, Zimmerman NJ, Iwamoto, et al. Experimental vitreous replacement with perfluorotributylamine. Am J Ophthalmol,1986,102:29-37.

　　5  Chang S, Reppucci V, Zimmerman NJ,  et al. Perfluorocarbon liquids in the management of traumatic retinal detachments. Ophthalmology,1989,96:785-791.

　　6   Nabih M, Peyman GA, Clark LC Jr, et al. Experimental evaluation of perfluorophenanthrene as a high specific gravity vitreous substitute: a preliminary report. Ophthalmic Surg,1989,20:286-293.

　　7  Liang C, Peyman GA. Tolerance of extended-term vitreous replacement with perfluoro-n-octane and perfluoroperhydrophenathrene mixture (phenoctane). Retina,1999,19:230-237.

　　8  Flores-Aguilar M, Munguia D, Loeb E, et al. Introculor tolerance of perfluorooctylbromide. Retina,1995,15:3-13.

　　9  Peyman GA, Blinder KJ, Paris CL, et al. Vitreon: a new perfluorocarbon vitreous substitute. Afro-Asian J Ophthalmol,1991,10:48-57.

　　10  Glaser BM, Carter JB, Kupperman BD,et al.Perfluorooctane in the treatment of giant retinal tears with prolifetative vitreoretinopathy. Ophthalmology,1991,98:1613-1621.

　　11  Scott IU, Murray TG, Flynn Jr HW, et al. Outcomes and complications associated with perfluoro-n-octane and perfluoroperhydrophenathrene in complex retinal detachment repair. Ophthalmology,2000,107:860-865.

　　12  Weinberger D, Goldenberg-Cohen N.Long-term follow-up of perfluorocarben liquids in the anterior chamber. Retina,1998,18:233-237.

　　13  Loewenstein A, Humayun MS, Eugene de Juan Jr, et al. Perfluoroperhydrophenathrene versus perfluoro-n-octane in vitreoretinal surgery. Ophthalmology,2000,107:1078-1082.

　　14  Hyndiuk R, Murray TG, Palmer M, et al. Perfluoro-n-octane: evaluation of anterior segment toxicity associated with intraocular use. Invest Ophthalmol Vis Sci,1991,32:880.

　　15  Moreira H,De Queiroz JM, Liggett PE, et al. Corneal toxicity study of two perfluorocarbon liquids in rabbit eyes. Cornea,1992,11:376-379.

　　16  Green K, Cheeks L, Friedman JM. Perfluorocarbon liquid effects on corneal endothelial permeability. Lens Eye Toxicity Res,1992,9:1-8.

　　17  Han DP, Nanda SK, O’Brien WJ, et al. Evaluation of anterior segment tolerance to short-term intravitreal perfluoron. Retina,1994,14:219-224.

　　18  Eckardt C, Nicolai U, Winter M, et al. Experimental intraocular tolerance to liquid perfluorooctane and perfluoropolyether. Retina,1991,11(4):375-384.

　　19  Winter M, Eckardt C, Havsteen B. Vitreous changes after contact with high-density substances: an in vitro experiment. Ger J Ophthalmol,1992,7:269.

　　20  Chang S, Sparrow JR, Iwamoto T, et al. Experimental studies of tolerance to intravitreal perfluoro-n-octane liquid. Retina,1991,11(4):367-374.

　　21  Elsing EH, Fekrat S, Green WR, et al. Clinicopathologic findings in eyes with retained perfluoro-n-octane liquid. Ophthalmology,2001,108(1):45-48.

　　22  Velikay M, Wedrich A, Stolbau, et al. Experimental long-term vitreous replacement with purified and nonpurified perfluorodecalin.  Am J Ophthalmol,1993,116:565-570.

　　23  Eckardt C, Nicolai U. Klinische und histologische bedunde nach mehrwochiger intraokularer tamponade mit perfluordekalin. Ophthalmologe,1993,90:443-447.

　　24  Ulrike S,Katharina K,Michaela VP, et al. The effect of specific gravity of perfluorocarbon liguid on the retina after experimental vitreous substitution. Graefe’s Arch Clin Exp Ophthalmol,2004,242:931-936.

　　25  Orzalesi N, Migliavacca L, Bottoni F, et al. Experimental short-term tolerance to perfluorodecalin in the rabbit eye: a histopathological study. Curr Eye Res,1998,17:828-835.

　　26  Peyman GA, Schulman JA, Sullivan B. Perfluorocarbon liquids in ophthalmology. Surv Ophthalmol,1995,39:375-395.

　　27  Winter M, Eberbardt W, Scholz C, et al. Failure of potassium siphoning by Müller cells: a new hypothesis of perfluorocarbon liquid-induced retinopathy. Invest Ophthalmol Vis Sci,2000,41:256-261.

　　28  Damiana Z, Jacob B,Ralf K,et al.Perfluorohexyloctane as a long-term vitreous tamponade in the experimental animal. International Ophthalmology,1999,23:17-24.

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