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缺氧下外源性血管内皮生长因子对体外大鼠Müller细胞的影响

http://www.cnophol.com 2008-12-22 10:40:05 中华眼科在线

    3讨论

    我们成功分离培养大鼠Müller细胞并建立细胞缺氧损伤模型,观察了缺氧对Müller细胞的影响,以及VEGF对Müller细胞的保护作用,并对其机制进行了初步分析。正常情况下,Müller细胞很少表达GFAP,VEGF及其受体(如Flk-1,Flt-1),短时间缺氧能够使Müller细胞GFAP,VEGF及其受体的表达显著升高,细胞形态变化,甚至发生凋亡,这种影响呈时相依赖性。缺氧12 h时Müller细胞的损伤最明显,细胞肿胀,活性降低,凋亡指数升高。其机制可能有:(1)缺氧使Müller细胞胞外K+浓度升高,导致细胞去极化及提高其代谢率;(2)缺氧导致无氧代谢增加,产生大量乳酸;(3)缺氧导致细胞内花生四烯酸水平升高[12],引起细胞肿胀;(4)更重要的是,Müller细胞内的Ca2+超负荷,它可对继发的Müller细胞增生提供信号[13],促进cyclin D1的合成表达,从而诱导细胞增生[14]。我们在缺氧处理前加入终浓度为10~100μg/L的外源性VEGF,与单独缺氧组比较,细胞活性升高,凋亡指数下降,提示外源性VEGF对Müller细胞抗缺氧损伤具有一定的保护作用。75μg/L和100μg/L VEGF处理组间,细胞活性和凋亡指数差异不明显,说明VEGF对Müller细胞的保护作用在一定范围内(<75μg/L)时呈剂量依赖关系,最大效应剂量可能约为75μg/L,超过75μg/L时,细胞活性并未出现更显著提高,这可能是VEGF受体相对饱和所致。脑组织星形胶质细胞研究发现,常氧下加入10~100μg/L VEGF,GFAP表达增加,细胞增生活性升高,并呈剂量依赖性[15]。加入MEK1抑制剂PD98059和PI-3激酶抑制剂wortmannin抑制了VEGF诱导的脑胶质细胞GFAP表达[14],说明正常环境中VEGF对脑胶质细胞的作用机制包含PI3/AKT和ERK/MAPK两条通路。Müller细胞是视网膜中一种特化的星形胶质细胞,具有一般星形胶质细胞的特点,但VEGF对缺氧Müller细胞作用机制是否也通过这两条通路实现,还需要进一步证实。

    血管内皮生长因子受体(vascular endothelial growth factor receptor, VEGFR)是VEGF特异性的膜受体,根据其结构与功能的不同主要分为:Flt-1(fms-like tysosine kinase),KDR/Flk-1(kinase insert domain containing receptor)及VEGFR-3共3种[16],Flt-1,Flk-1主要在血管内皮细胞表达,另外,Flk-1还分布在神经细胞、单核细胞和滋养层细胞等处。Khaibullina等[17]认为,Flk-1参与血管形成[18]、神经营养和神经保护过程[19],而Flt-1明确的作用至今还不清楚,有人认为与胶质细胞有关[20]。Mani等[15]研究证实,用Flk-1和Flt-1的反义寡核苷酸发现VEGF对脑胶质细胞起保护作用的主要受体是Flt-1而非Flk-1,而且在外源性VEGF为25μg/L时,细胞的增生活性即明显增加,VEGF为100μg/L时,细胞增生活性最高,凋亡指数最低。本实验中,加入Flk-1阻断剂SU1498后,VEGF对细胞的缺氧保护作用受到抑制,说明Flk-1参与了此过程,VEGF可能是一种细胞受缺氧应激因素影响下的保护因子。Flk-1,Flt-1随缺氧时间表达量增加,并呈剂量依赖性,以Flt-1最为明显,说明Flk-1,Flt-1都参与了 VEGF对缺氧Müller细胞的作用,以Flt-1更为重要。本实验所得量效关系与上述报道有所不同,可能与细胞种类、处理因素及VEGF的来源不同有关。

    总之,Müller细胞是视网膜中重要的神经细胞之一,发挥重要的视觉功能,研究缺氧条件下VEGF对Müller细胞的作用及其机制,可以有助于另一个侧面研究缺氧和辅助VEGF对于视网膜中多种细胞的影响,有助于各种视网膜细胞功能损伤的机制探索,为缺血性视网膜疾病的治疗提供新的思路。

   【参考文献】

1 Ferrara N, Davis-Smyth T. The biology of vascular endothelial growth factor. Endocr Rev ,1997;18:4-25

2杨艳,张明昌,张波.血管内皮生长因子及其受体在大鼠碱烧伤后角膜新生血管中的表达.国际眼科杂志,2006;6(6):1320-1322

3杨秀梅,王雨生,徐建锋,段春光,王常建,马吉献.血管内皮生长因子在实验性脉络膜新生血管生成中表达的时相变化.国际眼科杂志,2006;6(2):340-344

4 Ogunshola O, Stewart WB, Mihalcik V. Neuronal VEGF expression correlates with angiogenesis in postnatal developing rat brain. Brain Res ,2000;119:139-153

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6姜曙,丁新民,毛伯镛. VEGF对大鼠星形胶质细胞的缺氧保护作用及其机制. 四川大学学报(医学版), 2005;36(6):792-796

7苟琳,张作明,许汉鹏. 恒温摇动法纯化培养大鼠视网膜Müller细胞的技术研究. 眼科研究,2002;20(5):411-413

8李树宁,王华,白海青,王大博. 改进的酶消化法培养新生大鼠Müller细胞. 眼科研究,2005;4(23):155-157

9郭斌,惠延年,王应利. 体外内层血视网膜屏障模型中Müller胶质细胞对紧密连接的影响. 国际眼科杂志,2006;6(2):311-316

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11 Kim KS, Rajagopal V, Gonsalves C, Johnson C, Kalra VK. A novel role of hypoxia-inducible factor in cobalt chloride- and hypoxia-mediated expression of IL-8 chemokine in human endothelial cells. J Immunol ,2006;177(10);7211-7224

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14 Wiessner C, Brink I, Lorenz P, Neumann-Haefelin T, Vogel P, Yamashita K. Cyclin D1 messenger RNA is induced in microglia rather than neurons following transient forebrain ischemia. Neuroscience ,1996;72(4):947-958

15 Mani N, Khaibullina A, Krum JM, Rosenstein JM. Astrocyte growth effects of vascular endothelial growth factor (VEGF) application to perinatal neocortical explants: Receptor mediation and signal transduction pathways. Experimental Neurology ,2005;192(1):394-406

16 Xie K, Wei D, Shi Q, Huang S. Constitutive and inducible expression and regulation of vascular endothelial growth factor. Cytokine Growth Factor Rev ,2004;15(5):297-324

17 Khaibullina AA, Rosenstein JM, Krum JM. Vascular endothelial growth factor promotes neurite maturation in primary CNS neuronal cultures. Dev Brain Res ,2004;148:59-68

18 Lungu GF, Li ML, Xie X, Wang LV, Stoica G. In vivo imaging and characterization of hypoxia-induced neovascularization and tumor invasion. Int J Oncol ,2007;30(1):45-54

19 Kilic E, Kilic U, Wang Y, Bassetti CL, Marti HH, Hermann DM. The phosphatidylinositol-3 kinase/Akt pathway mediates VEGF's neuroprotective activity and induces blood brain barrier permeability after focal cerebral ischemia. FASEB J ,2006;20(8):1185-1187

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(来源:互联网)(责编:duzhanhui)

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