作者:生晖 作者单位:复旦大学附属眼耳鼻喉科医院 眼科,上海 200031
【摘要】 目的 探讨蓝光滤过型人工晶状体(intraocular lens,IOL)对含N-亚视黄基-N-视黄基乙醇胺(A2E)的人视网膜色素上皮(retinal pigment epithelium,RPE)细胞的细胞活力、氧化应激及分泌血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)、色素上皮衍生因子(pigment epithelium derived factor,PEDF)的影响。方法 体外培养含A2E的RPE细胞,用低强度蓝光持续照射,在光通路上置蓝光滤过型(AcrySof Natural)或紫外线阻挡型(AcrySof )IOL。细胞分为:A组(AcrySof Natural IOL,光照);B组(AcrySof IOL,光照);C组(光照,无IOL);D组(无光照,无IOL)。CCK-8检测细胞活力,流式细胞仪检测活性氧自由基(reactive oxygen species,ROS)水平,酶联免疫吸附法检测还原型谷胱甘肽(glutathione,GSH)、VEGF、PEDF含量。结果 A、B、C和D组细胞活力分别为(76.9±3.9)%、(42.5±4.3)%、(35.2±4.1)%、(96.7±3.1)%;ROS分别为511.53±67.43、1011.15±174.88、1022.23±158.72、452.82±77.98;GSH分别为(15.34±4.77)μmol/L、(2.57±1.96)μmol/L、(1.58±1.13)μmol/L、(19.73±5.49)μmol/L;VEGF/PEDF比值分别为1.40、9.76、14.86、0.71。同B、C组相比,A组细胞活力和GSH含量明显提高,ROS含量和VEGF/PEDF比值明显下降(P<0.05)。结论 蓝光滤过型IOL对A2E介导的RPE细胞蓝光损伤有保护作用,能够降低蓝光诱导的ROS和VEGF水平,优于紫外线阻挡型IOL。
【关键词】 视网膜色素上皮 维生素A酸类 光 晶 人工 年龄相关性黄斑变性
年龄相关性黄斑变性(age-related macular degeneration,AMD)随年龄增加发病率逐渐上升,并可导致视力不可逆性下降。脉络膜新生血管(choroidal neovascularization,CNV)是渗出型AMD的特征,而血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)和色素上皮衍生因子(pigment epithelium derived factor,PEDF)之间的平衡失调是CNV形成的重要机制。
白内障摘除透明人工晶状体(intraocular lenses,IOL)植入术后,大量蓝光进入眼内,造成视网膜蓝光损伤。本研究通过体外培养人视网膜色素上皮(retinal pigment epithelium,RPE)细胞,建立蓝光损伤模型,探讨蓝光及蓝光滤过型IOL对RPE细胞的细胞活力、氧化应激以及分泌VEGF、PEDF的影响。
1 材料和方法
1.1 RPE细胞培养 眼球来自复旦大学附属眼耳鼻喉科医院眼库,为角膜移植术后的供体眼球。剪除眼球外附着的肌肉和筋膜组织,用无菌生理盐水(含庆大霉素100×103 U/L)冲洗后置于冰盒内,12 h内用于实验。参照文献[1]报道方法培养RPE细胞,待细胞融合后做传代培养,取第4~第6代细胞用于实验。使用角蛋白和波形蛋白免疫细胞化学染色法对培养细胞进行鉴定,RPE细胞角蛋白染色强阳性,波形蛋白染色弱阳性(SABC法,DAB显色)。
1.2 N-亚视黄基-N-视黄基乙醇胺(N-retinylidene-N-retinylethanolamine,A2E)[2]体外合成及RPE细胞对A2E的摄取 全反式视黄醛(100 mg,352 ?滋mol)和乙醇胺(9.5 mg,155 ?滋mol)(Sigma,USA)混合,溶解于3.0 ml乙醇中,再加入9.3 ?滋l(155 ?滋mol)醋酸,室温下搅拌,密封后置于暗处2 d。混合物在真空中离心,残渣用硅凝胶柱层析法纯化。(MeOH):CH2Cl2(5:95)洗脱。(MeOH):CH2Cl2:三氟乙酸(trifluoroacetic acid,TFA)(8:92:0.001)再次洗脱后获得A2E。
采用HP1100型高效液相色谱(high performance liquid chromatography,HPLC)仪(美国安捷伦公司)获得纯化的A2E,反应条件如下:色谱柱:Cosmosil C18,4.6×150 mm;流动相:水/甲醇(85%~96%,含0.1%TFA),20 min;流速:1.0 ml/min;检测波长:430 nm。经HPLC纯化后的A2E溶解于甲醇中(约40 ?滋mol/L)。溶液置于室温、室内光线下 20 min。HPLC分析A2E的异构化程度(反应条件同上)。
A2E合成后,溶解于DMSO(dimethyl sulfoxide)中,调整A2E浓度为25 mmol/L,储存于-20℃的暗处。实验前,取出储存的A2E溶液,加入RPE细胞培养液中,使A2E的终浓度为25 ?滋mol/L,将RPE细胞置于37℃、5% CO2培养箱中孵育2 h后,置于荧光显微镜下观察A2E自发荧光,使用异硫氰酸荧光素 (fluorescein isothiocyanate,FITC)激发荧光(激发波长460~550 nm,发射波长510~560 nm),激发时间≤2 s。对照组RPE细胞不加入A2E。
1.3 光照模型 卤素灯发出的光,透过蓝色[(450±9)nm]干涉滤光片(上海海光光学元件厂)作为光源,光照时间为60 h,细胞平面光照强度为2W/m2,细胞培养液中加入A2E以及从培养箱中取出和放入等操作时,周围光照强度约为10 Lux(ZDS-10型照度计,上海嘉定学联仪表厂)。光照时,用电子温度计监测细胞平面温度变化在36.5~37.2℃。用环钻切取IOL中央光学区,放在培养孔的上表面,位于光束的中心。蓝光滤过型IOL为Alcon AcrySof?誖 Natural(SN60AT)(20.0 D,6.0 mm光学直径),紫外线阻挡型IOL为Alcon AcrySof?誖(SA60AT)(20.0 D,6.0 mm光学直径)。细胞分组如下:A组,光束中央放置AcrySof Natural IOL,接受蓝光照射;B组,光束中央放置AcrySof IOL,接受蓝光照射;C组,光束中央不放置IOL,接受蓝光照射;D组:细胞用铝箔覆盖,不接受光照,不放置IOL,其他条件同上。
1.4 细胞活力分析 接种100 μl RPE细胞悬液(5000个细胞/孔)于96孔板内。预先在37℃、5%CO2、饱和湿度的培养箱内培养。另准备几个孔并接种已知数量的活细胞来进行标定。在孔板内加入A2E,使A2E浓度为25 ?滋mol/L。在培养箱内培养 2 h后,蓝光照射,然后在每个孔内加入10 μl的CCK-8试剂(Dojindo Molecular Technologies Inc., Japan),培养板放在培养箱内继续培养2 h。用酶标仪在450 nm波长处测定吸光度(A)值,参比波长为600 nm。计算细胞生存率(%):细胞生存率(%)=处理组活细胞A值/对照组活细胞A值×100%。实验重复3次,取平均值。
1.5 流式细胞仪检测活性氧自由基水平 双氢-乙酰乙酸二氯荧光黄(2’,7’-dichlorodihydrofluorescein diacetate,H2-DCFH-DA)(Sigma,USA)为活性氧自由基(reactive oxygen species,ROS)探针,在细胞内被氧化成可发出荧光的二氯荧光黄(DCF),DCF 的荧光强度即代表细胞的ROS水平。收集RPE细胞,PBS漂洗后加入H2-DCFH-DA 1 μg/mL,37℃孵育15 min后以流式细胞仪检测(FACScan,B&D,USA)。
1.6 还原型谷胱甘肽含量测定 收集RPE细胞,离心弃杂质,冰PBS漂洗,加入10 mM HCl,再加入5% SSA,离心半径8 cm,1500 r/min离心10 min,取上清液,按照还原型谷胱甘肽(glutathione,GSH)含量检测试剂盒(Dojindo Molecular Technologies Inc., Japan)说明进行操作,酶标仪(Thermomultiskan MK3型)405 nm 波长读取吸光度(A)值,绘制标准曲线,查出相应GSH浓度。
1.7 VEGF和PEDF测定 用酶联免疫吸附法(enzyme linked immunosorbant assay,ELISA)测定RPE细胞培养液上清液中VEGF和PEDF的含量。待RPE细胞生长融合接近80%时,弃上清液,加入无血清培养液,继续培养24 h。光照后,收集培养液,离心半径8 cm,1500 r/min离心10 min,取上清液,按照人VEGF、PEDF的ELISA试剂盒(Quantikine R&D Systems,USA)说明进行操作。酶标仪(Thermomultiskan MK3型)450 nm波长读取吸光度(A)值,绘制标准曲线,查出相应VEGF和PEDF浓度。
1.8 统计学方法 实验重复3次,利用SPSS 10.0统计分析软件,采用配对t检验分析结果。P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 A2E合成及人RPE细胞对A2E的摄取 100 mg全反式视黄醛和9.5 mg乙醇胺在体外合成53.8 mg A2E(76.3 ?滋mol)。体外合成并经纯化后的A2E溶解于甲醇(40 ?滋mol/L),在室温、室内光线下暴露20 min后,HPLC分析A2E的异构化程度,形成A2E:iso-A2E=4:1的平衡状态。A2E加入RPE细胞培养液中,孵育2 h后,在荧光显微镜下可见A2E黄绿色自发荧光,主要分布于RPE的细胞核周围。自发荧光2 s以后逐渐淬灭(见图1)。对照组RPE细胞中没有加入A2E,没有观察到自发荧光。
2.2 细胞活力分析 A、B、C和D组细胞活力分别为(76.9±3.9)%、(42.5±4.3)%、(35.2±4.1)%、(96.7±3.1)%。B组和D组、C组和D组比较,差异均有统计学意义(P<0.05);A组和D组、B组和C组比较,差异均无统计学意义(P>0.05)。
2.3 ROS和GSH含量检测 A、B、C、D组的ROS和GSH水平见表1。同D组相比,A组的ROS水 平上升和GSH水平下降的变化差异无统计学意义(P>0.05),而B组和C组的ROS水平明显升高,同时GSH水平明显降低,差异有统计学意义(P<0.05)。A组与B组、A组与C组之间的ROS及GSH水平差异均有统计学意义(P<0.05),B组与C组间ROS及GSH水平差异无统计学意义(P>0.05)。
2.4 VEGF和PEDF含量检测 A、B、C、D组的VEGF和PEDF含量及VEGF和PEDF含量的比值见表2。同D组相比,A组的VEGF浓度上升和PEDF浓度下降的变化差异无统计学意义(P>0.05),而B组和C组的VEGF浓度明显升高,同时PEDF浓度明显降低,差异有统计学意义(P<0.05)。A组与B组、A组与C组之间的VEGF浓度上升和PEDF浓度下降差异均有统计学意义(P<0.05),B组与C组间VEGF和PEDF浓度变化差异无统计学意义(P>0.05)。
3 讨论
白内障手术与晚期AMD相关的临床资料提示蓝光暴露与渗出型AMD的发生发展有关[3]。本研究结果证实蓝光对RPE细胞有损伤作用,含有A2E的RPE细胞受持续低强度蓝光照射后,细胞活力下降、ROS含量增加、GSH含量降低、VEGF分泌量上调而PEDF分泌量下调,而蓝光滤过型IOL能够减轻光损伤,明显降低ROS和VEGF含量。
在该研究中,用低强度蓝光持续照射含有A2E的RPE细胞,并观察蓝光滤过型IOL和紫外线阻挡型IOL的保护作用,结果发现蓝光滤过型IOL能明显提高RPE细胞的细胞活力。有报道蓝光滤过型IOL (Alcon AcrySof?誖 Natural,SN60AT) 对RPE细胞蓝光、绿光和白光照射有保护作用[4];还有研究者发现黄色IOL(YA60BB, Hoya)同传统的紫外线阻挡型IOL相比,能降低白光对含A2E的RPE细胞的损伤[5]。这些实验在设计方案上存在差异,但结果都证实了蓝光滤过型IOL对RPE细胞有保护作用。
本研究发现,蓝光照射含有A2E的RPE细胞后,细胞产生大量的ROS,GSH水平明显下降。光氧化反应是ROS的主要来源,蓝光导致RPE细胞光化学损伤的机制还不完全清楚,而ROS可能是蓝光损伤的介导物。RPE细胞摄取A2E后暴露于短时间高强度蓝光,发生细胞凋亡[4,6]。本研究用低强度蓝光持续照射,同时观察到细胞活力下降,VEGF分泌增加。短时间高强度光照会导致细胞凋亡,而低强度持续照射时,对细胞产生氧化应激,细胞启动防御机制。急性高强度和慢性低强度光照射对RPE细胞的不同影响和机制及其在渗出型AMD发病中的作用还需要进一步研究。
RPE细胞能够合成和分泌多种细胞因子,其中VEGF和PEDF是目前已知最重要的血管形成促进和抑制因子,两者的协同作用在CNV形成中起关键作用。正常情况下,两者表达处于动态平衡,病理损伤时平衡破坏,血管异常增生[7]。该研究观察到蓝光照射导致RPE细胞分泌VEGF的量上调而PEDF下调,VEGF是一种促血管生成因子,能够增加血管的通透性,从而促进CNV的生成[8]。在糖尿病患者和糖尿病动物模型中观察到过度表达VEGF能够增加视网膜血管的通透性[9-10]。PEDF是血管生成的抑制因子,最初在培养的RPE细胞中发现[11-12]。在增生性糖尿病性视网膜病变患者的玻璃体液中发现PEDF含量下降[13]。血管通透性增加也是新生血管的一个重要致病因素,PEDF对血管周细胞有保护作用,并可通过上调VEGF-C及其受体VEGF-R3的表达,对抗VEGF引起的血管通透性增加[14]。研究结果可能有助于解释白内障手术增加渗出型AMD发生率的原因[3],可以推断蓝光滤过型IOL同传统紫外线阻挡型IOL相比,可能能够预防和阻止渗出型AMD的发生发展。
总之,蓝光照射能够损伤含有A2E的RPE细胞,RPE细胞的损伤是光感受器细胞损伤、AMD发生的预兆。本研究推断,蓝光滤过型IOL同传统紫外线吸收型IOL相比,对A2E介导的RPE细胞光损伤有保护作用,能够降低光诱导的ROS和VEGF水平,从而降低渗出型AMD发生的风险。但这一结论尚需进行长期大规模的临床试验研究来证实。
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