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内皮抑素的低分子肝素修饰及对兔角膜新生血管的抑制作用

http://www.cnophol.com 2009-8-19 10:29:26 中华眼科在线

    【关键词】  低分子肝素 内皮抑素 修饰 角膜 新生血管 兔

    its angiogenesis effects on rabbit corneas

     Abstract: Objective   To investigate the modification of endostatin (ES) with low molecular weight heparin (LMEH) and its inhibitory effects on corneal neovascularization(CNV). Methods   ES was modified with LMWH by a chemical method. The rabbit CNV model was made with alkali burning. LMWHES(group 1), ES (group 2) and normal saline(control group) were subconjunctivally injected. Results  The blood vessel was shorter and smaller in group 1 than in  the other two groups(P<0.05) and the expression of VEGF in group 1 was also significantly lower than that of the other two groups(P<0.05). Conclusions   LMWHES can effectively inhibit the growth of CNV and is superior to ES.

    Key words: Low molecular weight heparin; Endostatin; Modification; Cornea; Neovascularization; Rabbit

    找一种效果更佳的内皮抑素修饰物。

    1  资料与方法

    1.1  材料  含内皮抑素基因的重组表达载体工程菌(山东大学免疫学研究所); LMWH(50 antFXa u/mg,中国烟台东诚生化有限公司); 健康成年新西兰白兔30只(山东大学动物实验中心),体重2.0 2.5?kg,雌雄兼有,眼部无异常。

    1.2  方法

    1.2.1  LMWH对ES的化学修饰  采用毕赤酵母表达系统,按照文献[4]的方法进行内皮抑素蛋白的表达,分离纯化后得到电泳单点纯的内皮抑素。采用高碘酸氧化法活化LMWH,制得LMWH活化液,于pH 9.5、0.3?mol/L的NaCO- NaHCO3缓冲液中对内皮抑素进行化学修饰。通过SDSPAGE电泳监测修饰反应过程,比较不同时间点修饰液的自由氨基修饰率、活性保留百分率。测定ES及LMWHES在25?℃和37?℃水浴中的热稳定性。

    1.2.2  LMWHES及ES对兔角膜碱烧伤后新生血管抑制作用的观察  30只兔用氯胺酮(25?mg/kg)及氯丙嗪(25?mg/kg)诱导全麻,将浸润1?min的1?mol/L氢氧化钠滤纸片置于兔右眼角膜中央30?s,然后立即用20?ml BBS冲洗烧伤区及结膜囊1?min建立实验模型。

    随机将兔分为3组,每组10只。碱烧伤后第一天,分别在球结膜下注射50?μg/ml LMWHES(Ⅰ组)、50?μg/ml内皮抑素(Ⅱ组)和生理盐水(对照组)各0.2?ml,以后隔日注射1次,共8次。每天行裂隙灯显微镜观察球结膜、角膜有无充血、水肿及全身状况。并于术后第4、7、10、13天用双脚规测量CNV长度,并用数码相机定位拍摄CNV生长状态,将其输入计算机使用软件Image Pro Plus进行图像分析。

    碱烧伤后16天用空气栓塞法处死动物,无菌下取带2?mm宽巩膜的角膜组织进行病理学检查 ,进行HE染色和SP免疫组化分析。染色结果判断:细胞浆黄色为+,棕色为,棕黑色为;结果分析:采用日本产LUZEXF图像分析仪,以灰度值表示VEGF的含量。微血管数量观察:取上述免疫组化切片,每只眼选3张,每张切片任选5个高倍视野(×400),计算每个视野下CNV横断面数目。

    1.3  统计学处理  计量资料以±s表示,采用方差分析检验,以P<0.05为差异有统计学意义。部分指标行相关分析,数据统计运算采用(statistic package social science,SPSS 11.5)统计软件包。

    2  结  果

    2.1  LMWH对ES的化学修饰  采用毕赤酵母表达系统获得的内皮抑素分子量约为20?KD,纯度达98%以上。通过SDSPAGE电泳监测修饰反应过程,比较不同时间点修饰液的自由氨基修饰率、活性保留百分率以及比较电泳监测结果确定LMWH修饰ES的时间为48?h。对分离纯化后的LMWHES进行SDSPAGE电泳鉴定,结果显示纯化后的LMWHES在30?kD左右出现一条单一条带,见彩图6。

    ES和LMWHES在25?℃和37?℃时的稳定性比较及活性保留百分率(%):37?℃时稳定性大小为LMWHES>ES,保温60?min后活性保留百分率:LMWHES(59.34%)、ES(49.91%);25?℃时稳定性大小为LMWHES>ES,保温60?min后活性保留百分率:LMWHES(74.46%)、ES(66.78%)。

    2.2  LMWHES、ES对兔角膜新生血管的抑制作用情况  Ⅰ组角膜水肿轻,CNV细小,稀疏,多集中于上角膜缘,呈缓慢性生长,血管未长入烧伤区;Ⅱ组角膜水肿不明显,CNV短、小,管径较细,生长较缓慢,血管接近烧伤区。对照组角膜水肿重,CNV粗乱,密集,生长快且范围广,第4天可见CNV向碱烧伤处生长,第10天可见CNV长入接近瞳孔区。在碱烧伤后第7天Ⅰ组、Ⅱ组、对照组的平均新生血管长度(mm)分别为1.32±0.18、1.77±0.27、2.32±0.58, 平均面积(mm2)为4.33±1.21、5.84±1.27、7.52±1.35,治疗组与对照组相比以及两治疗组间相比差异有统计学意义(P<0.05)。碱烧伤后第13天的新生血管生长情况见彩图7 9。

    VEGF免疫组化结果为:对照组在角膜全基质层内有炎性细胞浸润,在炎性细胞胞浆可见VEGF表达呈;Ⅰ组在角膜前1/3基质层内有炎性细胞浸润,在炎性细胞胞浆可见VEGF表达呈+ ;Ⅱ组在角膜前1/2基质层内有炎性细胞浸润,在炎性细胞胞浆可见VEGF表达。图像分析显示Ⅰ组、Ⅱ组与对照组VEGF含量(灰度值)依次为102.35±18.56、125.46±21.43、152.05±25.24,治疗组与对照组相比及两治疗组间相比VEGF表达均明显减少(P<0.05)。

    新生血管形态和数量观察的结果:对照组在角膜全基质层内可见大量成熟的新生血管,管壁薄、管腔大、排列紊乱;Ⅰ组浅基质层内可见少量新生毛细血管,管腔较小,分布稀;Ⅱ组新生血管介于两者之间。Ⅰ组、Ⅱ组、对照组的新生血管数量(个/400倍视野)分别为1.05±0.84、3.56±1.85、6.22±2.79,治疗组与对照组相比及两治疗组间相比差异有统计学意义(P<0.05)。

    3  讨  论 

    ES是1997年于小鼠血管内皮细胞瘤的培养上清中发现的,后证实是由体内XVIII型胶原在组织蛋白酶或金属蛋白酶作用下,其羧基末段被分解出的一段大小为20?kD的片段[1]。ES是目前公认的最强的新生血管抑制剂,可以特异性作用于血管内皮细胞,抑制其增殖和移行,从而抑制新生血管生长。

    近年来多肽、蛋白质作为药物,已越来越多地应用于临床。但是蛋白质具有抗原性,且有的蛋白质由于在体内半衰期短、生物利用度低而达不到治疗作用。化学修饰能够赋予蛋白质和多肽类药物许多优良性能,如免疫原性降低或消失,毒副作用减少,半衰期延长,物理、化学和生物稳定性增强等。基于内皮抑素的作用机制及肝素的生物学特性,内皮抑素既对内皮细胞有亲和作用又具有肝素的特异性结合位点[5],故本研究采用LMWH对ES进行结构修饰。

    我们利用LMWH成功的对内皮抑素进行了化学修饰,获得了理想的内皮抑素修饰物,其在25?℃和37?℃时的稳定性及活性保留百分率明显优于内皮抑素,表明低分子肝素化后的内皮抑素稳定性得到增强,在不明显影响其活性的前提下,其最佳修饰反应的时间为48?h。

    角膜CNV是由角膜缘血管网形成的新生毛细血管逐渐侵入角膜而形成,与血管内皮细胞的增殖密切相关[6]。本实验采用碱烧伤法诱导角膜新生血管的形成[7],该模型非常逼真地再现了角膜碱烧伤的病理状态,是研究炎症性新生血管发生机制和治疗的重要手段,且此模型操作简便,便于观察和比较新生血管生长状况。

    将LMWHES用于治疗碱烧伤诱导的角膜新生血管,结果表明它可明显抑制CNV的增生,主要表现为CNV生长速度减慢,生长面积较少,与内皮抑素组及生理盐水对照组相比,有统计学差异(P<0.05)。组织病理学结果显示LMWHES组只在浅基质层内见少量新生毛细血管、管腔较小、分布稀疏,与内皮抑素组及对照组比较新生血管数量明显减少,VEGF的表达也明显低于上述二组。

    本研究表明,内皮抑素经过低分子肝素修饰后,热稳定性增强,抑制兔眼角膜新生血管的作用优于内皮抑素。

    【参考文献】

    [1] 〖ZK(#]O′reilly M S, Boehm T, Folkman J, et al. Endostatin:an endogenous inhibitor of angiognesis and tumor growth[J]. Cell, 1997, 88(2):277285.

    [2] Robert B M,George K A. Serotonergic facilitation of facial motoneuron excitation[J]. Brain Res, 1979, 169:1127.

    [3] Feng J, Cai X, Zhao J H, et al. Serotonin receptors modulate CABAA receptor channels through activation of anchored protein kinase C in prefrontal cortical[J]. J Neurosci, 2001, 21(17):6502.

    [4] 王晓燕,孙汶生,马春红,等. 重组人分泌型endostatin的纯化及其抑癌活性探讨[J].中国肿瘤临床,2003,30(2):136139.

    [5] Kreuger J, Matsumoto T, Vanwildemeersch M, et al. Role of heparan sulfate domain organization in endostatin inhibition of endothelial cell function[J]. EMBO J, 2002, 21(23):63036311.

    [6] Chang J H, Gabison E E, Kato T, et al. Corneal neovascurization[J]. Curr Opin Ophthalmol, 2001,12(4):242249.

    [7] 邱培瑾.角膜新生血管的动物模型[J].国外医学眼科学分册,2000, 24: 360363.

(来源:互联网)(责编:xhhdm)

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