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银杏叶提取物对高糖环境下人视网膜血管内皮细胞增殖、凋亡的影响

http://www.cnophol.com 2009-8-28 10:50:38 中华眼科在线

    3讨论

    糖尿病视网膜病变发病机制目前并不完全清楚。传统观点认为高血糖导致微血管病变与多元醇通路活性增高、糖基化终产物形成增多、蛋白激酶C激活以及氨基己糖通路活性增高有关 [4.5]。有研究显示:DR形成过程中,线粒体电子传递链中超氧化物增多[5],即氧化应激可能是DR共同发病机制。高血糖被认为是DR发病的基础,导致氧化酶损伤,细胞因子表达增加、活化,血管内皮功能紊乱,微血栓形成,产生微循环障碍,组织缺血缺氧,诱导新生血管形成等;在这一病理过程中,血管内皮细胞的活动是DR形成的中心环节。GBE是临床常用的中药,其主要药效成分是黄酮类和内酯类化合物,药理学作用:(1)清除自由基,抗氧化作用;(2)拮抗血小板活化因子(PAF),降低血粘度,减少红细胞聚集,抗血栓,降低毛细血管通透性;(3)影响葡萄糖的摄取和糖原的合成。因此,本研究中我们探讨了GBE对高糖条件下HRCECs增殖和凋亡的影响,以进一步阐明GBE对DR的作用。

    本研究显示,GBE能促进高糖条件下HRCECs增殖,并存在浓度和时间依赖性;另外,我们观察到高糖条件下HRCECs增殖指数降低,与低糖组比均有显著性差异(P<0.05),表明高糖抑制HRCECs增殖。文献报道, 高糖作用于培养的人微血管内皮细胞,其增殖受到抑制,增殖率下降[6 ], 与本研究结果一致。高糖可导致氧自由基产生增多[7]。Graier等[8 ]研究发现高糖对内皮细胞增殖的抑制作用与自由基有关,自由基攻击膜蛋白及胞内的酶系统和核酸, 使细胞增殖率下降。因此我们推断GBE促进高糖条件下HRCECs增殖主要是GBE清除自由基,抗氧化的作用,也可能与GBE影响葡萄糖的摄取和糖原的合成等其他多因素有关,须进一步探讨。

    我们在实验中运用AO/EB荧光双染法和流式细胞术两种不同方法检测HRCECs的凋亡,结果均表明:GBE能降低高糖条件下HRCECs凋亡率,抑制HRCECs凋亡的发生;并存在浓度依赖性:随GBE作用浓度的升高HRCECs凋亡率下降,且组间有显著性差异(P<0.05)。DR形成过程中是否有内皮细胞的凋亡存在争议,Li等[9]发现高糖引起周细胞的凋亡,未见内皮细胞的凋亡,但刘学政等[10]报道大鼠DR早期已存在视网膜血管内皮细胞凋亡。Mizutani等[11]观察发现DR患者及早期糖尿病大鼠的视网膜微血管内皮细胞凋亡加快。马建芳等[12]发现高糖诱导HRCECs的凋亡。我们的研究也证实了这一结果,但是高糖诱导HRCECs凋亡的分子机制并不清楚。研究表明氧化应激是重要的细胞凋亡诱导因子,高糖状态下细胞糖代谢加剧,甚至代谢紊乱,使细胞内反应性氧自由基(ROS)水平升高,谷胱甘肽氧化还原循环障碍,细胞清除氧自由基能力下降,诱导细胞凋亡[13,14]。我们认为GBE降低高糖条件下HRCECs的凋亡与清除氧自由基,抗氧化以及影响糖代谢的作用密切相关,也可能是GBE影响细胞内信号传导通路共同作用的结果,我们将进一步研究证实。

    综上所述,我们的实验研究表明:GBE能促进高糖条件下HRCECs的增殖,抑制其凋亡,增强HRCECs在高糖条件下的生存活力,使HRCECs的增殖和凋亡处于正常的动态平衡,有利于血管内皮正常生理功能的恢复、稳定;GBE对预防DR的形成、发展有重要的积极意义,具有广阔的临床应用前景。

    【参考文献】

    1 Fitzl G, Welt K, Wassilew G, et al. The influence of hypoxia on the myocardium of experimentally diabetic rats with and without protection by Ginkgo biloba extract.Ⅲ. Ultrastructural investigations on mitochondria. Exp Toxicol Pathol 2001;52(6):557568

    2李斌,唐仕波,张革,等.人类视网膜血管内皮细胞的培养与鉴定.眼科研究 2005;23(1):2022

    3 Capetandes A, Gerritsen WE. Simplified methods for consistent and selective culture of bovine retinal endothelial cells and percytes. Invest
Ophthalmol Vis Sci 1990;31:17381744

    4 Lipinski MJ, Fuster V, Fisher EA, et al. Technology Insight:targeting of biological molecules for evaluation of highrisk atherosclerotic laques. Nat Clin Pract Cardiovasc Med 2004;1:4855

    5 Guzik TJ,Mussa S,Gastaldi D, et al. Mechanisms of increased vascular sueroxide production in human diabetes mellitus:role of NAD(P)H oxidase and endothelial nitric oxide synthase. Circulation 2002;105:16561662

    6 Kamal K, Du W, Mills I, et al. Antipro2 liferative effect of eleveated glucose in human microvascular endothelial cells. J Cel Biochem 1998;71(4):491496

    7 Ceriello A. New insights on oxidative stress and diabetic complications may lead to a "causal" antioxidant therapy. Diabetes Care 2003;26(5):15891596

    8 Graier WF, Grubenthal I, Dittrich P, et al. Intracelluar mechanism of high Dglucose induced modulation of vascular cell proliferation. Eur J
Pharmacol 1995;294(1):221229

    9 Li W, Liu X, Yanoff M, et al. Cultured retinal capillary pericytes die by apoptosis after an abrupt fluctuation from high to low glucose levels: A comparative study with retinal capillary endothelialcell. Diabetologia 1996;39:537547

    10刘学政,萧鸿,王中彬,等.糖尿病早期大鼠视网膜毛细血管细胞凋亡研究.眼科研究 2001;19(1):3538

    11 Mizutani M,Kern Ts,Lorenzi M.Accelerated death of retinal microvascular cells in human and experimental diabetic retinopathy. J Clin Invest 1996;97(27):28832890

    12马建芳,杨中汉,宋志宏,等.大剂量葡萄糖诱导人视网膜内皮细胞凋亡.第一军医大学学报 2003;23(5):435438

    13刘伟,李红.银杏叶提取物的药理作用及其在眼科疾病的临床研究进展.国际眼科杂志2008;8(8):16471649

    14李才锐,孙曙光,姜德咏,等.银杏叶提取物治疗早期糖尿病视网膜病变观察.国际眼科杂志2006;6(1):7881

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(来源:互联网)(责编:xhhdm)

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